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蛋白質(zhì)純化之離子交換法

日期:2010-09-03 15:54:15

一、儀器設(shè)備

1.塑料管柱(Bio-Rad Econo-Pac column 732-1010, 1.5×12 cm)

2.部分收集器(fraction collector, 另需準(zhǔn)備干凈試管約60 支)

3.濃縮用離心機(jī)(低速5,000 rpm)及濃縮離心管Centriplus

二、藥品試劑

1.DEAE Sephacel (膠體體積約15 mL,預(yù)先以緩沖液Buffer A-0 平衡好)

2.Buffer A-0

3.Buffer A-300 溶離液:Buffer A-0 加有0.3 M NaCl

4.Buffer A-500 溶離液:Buffer A-0 加有0.5 M NaCl

三、方法步驟

1.將Econo-Pac 管柱架好,并將三向閥及軟管等組合完成。

2.震蕩DEAE Sephacel 膠體使其懸浮,小心倒入管柱中,讓膠體慢慢沉降,在沉降過(guò)程中隨時(shí)加入buffer A-0,勿使膠體干掉。

3.待膠體沉降完全后,高度應(yīng)在15 cm 左右。膠柱以buffer A-0 一直流洗,流速快慢可以不考慮;連接好收集器,每試管收2.5 mL。離子交換法的膠體平衡極為重要,可測(cè)流出液的pH 或離子濃度,看是否與buffer A-0 相同,若不一樣則需要再流洗的。

4.樣本的添加方法同上述膠體過(guò)濾法,并啟動(dòng)部分收集器開(kāi)始收集,當(dāng)樣本全部沒(méi)入膠體后,再加入同體積buffer A-0。以buffer A-0 流洗50 mL 后,去除膠體上方的緩沖液,但勿使膠體干掉。

5.然后依序以buffer A-300, buffer A-500 溶離的,每批次流洗各50 mL,注意更換濃度時(shí),膠體上方勿殘存上一種溶液。

6.收集所有分劃,進(jìn)行蛋白質(zhì)定量分析以及GUS 活性測(cè)定,結(jié)果作圖。

7.收集GUS 活性區(qū),并以Centriprep-30 濃縮至 __ mL (IEX),記得要保留100 μL。

8.離子交換膠體以buffer A-0 洗過(guò)50 mL 后,收起來(lái)交回。